设计:对比观察实验。
材料:
实验动物:新西兰大白兔,3月龄,体质量1.0-1.5 kg,由解放军第二军医大学实验动物中心提供。
实验过程中对动物的处置应符合2009年《Ethical issues in animal experimentation》相关动物伦理学标准的条例。
方法:
兔骨髓间充质干细胞的体外分离培养方法:在无菌条件下采用髂前上棘穿刺获取兔骨髓2.0-3.0 mL,密度梯度离心及贴壁法采集骨髓间充质干细胞,细胞计数。以 1×108 L-1 (T-25 cm培养瓶)的细胞浓度接种于含体积分数10%胎牛血清的DMEM培养基中,置于37 ℃、体积分数5%CO2的饱和度湿度培养箱中,培养3 d后,全量更换培养基,弃掉未贴壁细胞。
在培养过程中,每3 d全量换液1次。当原代细胞(P0)生长至瓶底部80%-90%融合时用1∶1的EDTA(2%)和胰蛋白酶(25%)混合液消化传代,在倒置显微镜下观察控制消化时间,以5×107 L-1的浓度接种于T-25cm培养瓶中进行扩增培养。
腺病毒转染:24孔板标记顺序后分成3组,每组接种P2代骨髓间充质干细胞1×104个,培养24 h。第1,2孔用Ad.bFGF-eGFP病毒液浸染,作为第3,4孔用Ad.eGFP病毒液浸染,前2组MOI值设为50,第5,6孔继续常规培养。37 ℃体积分数5%CO2孵育箱中孵育24 h后换用体积分数10%胎牛血清DMEM培养液。每72 h收集一次培养的上清液,装入15 mL离心管,共收集5次,每次收集后向细胞中重新加入体积分数10%胎牛血清DMEM培养液。转染后采用流式细胞检测细胞绿色荧光表达
MTT法检测细胞增殖速率:Ad.bFGF-eGFP转染骨髓间充质干细胞后,与正常第2代骨髓间充质干细胞以1×103/孔的浓度分别接种于96孔培养板,每个培养板每组接种8孔,培养后3 d后在各检测孔吸去培养液,PBS冲洗3遍后加入MTT 100 µL,37 ℃孵育4 h,加DMSO 100 µL,30 min待结晶完全溶解后,以MTT 100 µL+ DMSO 100 µL做标准孔,紫外分光光度计450 nm检测吸光度值(A)。
ELISA法检测上清液碱性成纤维细胞生长因子蛋白含量:将抗原用包被稀释液稀释到每孔20-200 μg,每孔抗原加入100 μL,置37 ℃,4 h,弃去孔中液体。体积分数5%胎牛血清置37 ℃封闭40 min。封闭时将封闭液加满各反应孔,并去除各孔中的气泡,封闭结束后用洗涤液满孔洗涤3遍,每遍3 min。洗涤方法:吸干孔内反应液,将洗涤液注满板孔,放置2 min略作摇动,吸干孔内液,倾去液体后在吸水纸上拍干,洗涤次数3次。
根据酶结合物提供商提供的参考工作稀释度进行。37 ℃,30 min,每孔加100 μL,洗涤同前。每孔加入底物液(TMB-过氧化氢尿素溶液)100 μL,置37 ℃避光放置3-5 min,加入终止液显色。每孔加入终止液50 μL终止反应,于20 min内测定实验结果。
主要观察指标:相差显微镜观察各组细胞形态变化,MTT法测定细胞增殖曲线,ELISA法分析各组细胞上清液中碱性成纤维细胞生长因子蛋白含量。
统计学分析:由本文作者进行统计学处理,3组间差异应用单因素方差分析,组间两两差异比较应用LSD-t 检验, P≤ 0.05为差异有显著性意义,所有数据的差异分析应用SPSS 16.0软件处理。